全自动外泌体荧光检测分析系统
                全自动外泌体荧光检测分析系统
                全自动外泌体荧光检测分析系统

                全自动外泌体荧光检测分析系统


                美国NanoView公司所开发的全自动外泌体荧光检测分析系统是一款无需纯化的、全自动的可对单个外泌体进行表征分析的全新设备。该设备能够提供全方位的外泌体表征信息,包括外泌体粒径大小、计数、分布、携带蛋白表达、生物标志物(CD9,CD81,CD63等)共定位等。操作简单,结果可靠。一经推出,便引起了外泌体领域科研工作者的广泛关注,短短两年时间在全球已有50多个实验室采用该技术,发表重要文献近百篇。

                全自动外泌体荧光检测分析系统的基本原理是一种基于特异性免疫捕获技术,允许研究者直接分析特定群体的外泌体或外囊泡。通过配套的试剂盒,客户一次性能够分析多达9个不同的样本,大大节省了时间和经济成本。全自动外泌体荧光检测分析系统兼容各种生物样本,除了纯化的外泌体之外,对于血液、尿液、恶性肿瘤、腹水中的外泌体也可直接检测分析,大大拓展了研究范围。


                ExoView外泌体全面表征试剂盒(点击了解详情)

                https://qd-china.com/zh/pro/detail/3/2107091316252

                应用方向及主要特征


                生物标记物共定位

                最多可量化4种标记物的表达情况


                计数分析

                直接从样品中计算抗原阳性外泌体的数量,无需提纯


                粒径分析

                高精度统计外泌体的颗粒大小及分布


                检测外泌体内容物

                使用ExoView Cargo试剂盒可探测外泌体内部核酸的装载情况,分析装载率


                荧光检测

                具备3个荧光通道,能够探测单个蛋白的结合


                线性工作流程

                最高9个样品的全自动分析


                无须纯化

                无需担心纯化带来的误差,更精确的测量样品间的表征和表达信息的差异


                多重样本分析

                最多可使用6种表面标记物来筛选外泌体



                ExoView? 参数信息:


                - 颗粒大小分辨范围:大于50 nm(可分析大于40 nm的病毒颗粒)

                荧光粒径分辨范围:大于20 nm

                所需样本体积:25 μL

                激发波长:410 nm,488 nm,555 nm,640 nm

                可一次检测16个样本,每个样本可同时检测6个不同亚型及3种生物标记的荧光定位

                单个样品检测时间:8分钟

                捕获抗体:一个芯片最多允许6种捕获抗体(+阴性对照)

                荧光通道:3个荧光通道


                ExoView? Kit 配置清单:


                ExoView?

                Tetraspanin Kits


                CD9 - 捕获抗

                CD63 - 捕获抗体

                CD81 - 捕获抗体

                Mouse IgG 阴性对照 

                CD9、CD63、CD81三色共标记荧光抗体。


                ExoView?

                Tetraspanin Plasma Kits


                CD9 - 捕获抗体

                CD63 - 捕获抗体

                CD81 - 捕获抗体

                CD41a - 捕获抗体

                多达三种定制化捕获抗体

                同种阴性对照 

                CD9、CD63、CD81三色共标记荧光抗体。


                ExoView?

                Tetraspanin Custom Kits


                CD9 - 捕获抗体

                CD63 - 捕获抗体

                CD81 - 捕获抗体

                多达三种定制化捕获抗体

                同种阴性对照

                CD9、CD63、CD81三色共标记荧光抗体。


                ExoView?

                Cargo Kits


                兼容所有ExoView Kit

                标准 CD9, CD63CD81 捕获抗体

                Mouse IgG 阴性对照 

                ExoView Cargo 试剂

                CD9、CD63、CD81三色共标记荧光抗体。

                Sytenin荧光抗体



                全方位的外泌体粒径分析

                全自动外泌体荧光检测分析系统能够对>50 nm的外泌体进行全方面的表征,无论是粒径尺寸、粒径分布还是外泌体的亚型均可在一次测试中得到。并且所用来测试的样本无需进行纯化,避免因纯化带来的样本偏差。

                分析不同大小和不同尺度的外泌体亚群,在CD171过表达系统中,100 nm以上的外泌体仅表达了CD171。

                 

                量化外泌体亚群 

                通过抗体捕获的模式,全自动外泌体荧光检测分析系统能够量化含有不同标记物的外泌体亚群,并对不同种群的外泌体进行特异性计数和分析。整个过程无需纯化,并且线性范围可跨越3个数量级。

                TSPAN8阳性细胞外囊泡的稀释曲线。使用1:3比例的梯度稀释。用R2 = 0.9986计算与TSPAN8荧光数据的线性拟合。

                 

                检测外囊泡中的装载物 

                MISEV建议在表征外泌体和外囊泡时,应当同时测量表面和载体蛋白。使用ExoView芯片可穿透外泌体,探测膜内蛋白和载体。并且单次可定量3种表面、管腔蛋白。

                检测细胞外泌体内的Syntenin。

                WT细胞在未穿膜的条件下几乎观测不到Syntenin的信号。进行穿膜处理后可以观测到Syntenin信号,而KO之后信号消失

                 

                生物标志物共定位 

                全自动外泌体荧光检测分析系统能够在单个外泌体样本上检测多达4种标记物,并同时提供外泌体的其它表征数据诸如计数、颗粒尺寸统计等。

                 

                无需纯化

                全自动外泌体荧光检测分析系统只测量含有靶标抗原的特定细胞外泌体群体。仅需35 μL的稀释样品,即可直接获得外泌体的表型、粒径和计数信息。并且无需担心污染物对测试的影响。

                无论纯化与否,Exoview均可进行分析


                Life:全新外泌体内容物检测技术助力治疗婴儿早产药物研发


                外泌体内容物包含蛋白质、RNA、DNA和脂类,可被用于药物传递系统与疾病的新型诊断标志物,具有重要的研究意义。但传统的技术方法如Western Blot,ELISA,无法获得单个外泌体的蛋白表型,更不能将检测内容物与粒径分析、浓度分析、计数等联系起来,极大地制约了外泌体内容物的相关研究。单外泌体表征分析(Exoview)首先利用免疫识别将特定的外泌体进行捕获分离,然后再对目标外泌体的表面标志物及内容物(如携带的蛋白质、RNA、DNA及细胞因子)进行定量分析,从而更加全面地反映外泌体内容物的特性。近日,《Life》期刊刊登了Kammala等人的最新研究成果,该团队使用全自动外泌体荧光检测分析系统 Exoview检测胎膜和胎盘外泌体的内容物,来研究母胎界面的药物转运。

                研究组首次发现了CTC和BeWo细胞以外泌体内容物的形式转运BCRP。先前的研究发现,含CD63的外泌体可将跨膜蛋白转运至管腔内囊泡中,而药物转运蛋白也是一种跨膜蛋白,可以被转运至特定的组织发挥作用。胎膜细胞可通过含有BCRP的外泌体,以旁分泌的形式使其他细胞获得药物转运蛋白,影响特定组织的环境。通过这项新发现,改变现有的产科药理学,可以开发以BCRP+外泌体,尤其是CD63+/BCRP+的外泌体作为靶标的新型靶向药物,有效提高药物转运能力,降低早产的发生率,减轻孕期用药的不良反应,改善现有的孕期治疗方法。

                  

                参考文献:[1] Kammala,   A., Benson, M., Ganguly, E., Radnaa, E., Kechichian, T., Richardson, L.,   & Menon, R. (2022). Fetal Membranes Contribute to Drug Transport across   the Feto-Maternal Interface Utilizing the Breast Cancer Resistance Protein   (BCRP). Life, 12(2), 166.


                详情请参考:https://qd-china.com/zh/news/detail/2204211043443




                bioRxiv:全自动外泌体荧光检测分析技术助力科学家开发出一种有效鼻腔新冠疫苗


                新冠疫情爆发以来,多种不同的疫苗(mRNA疫苗、慢病毒疫苗、灭活病毒等)在全世界的抗疫中发挥了重大作用。然而现有的疫苗也有一些局限性,如储存运输条件苛刻、需要接种加强针、对突变病毒不敏感等等。最近,bioRxiv发表了一篇基于细菌外泌体的新型新冠疫苗对疾病?;ぷ饔玫奈恼?,或许可以为新冠疫苗的研发提供新的思路。

                Jiang和Driedonks等[1]通过对细菌来源的外囊泡表面修饰病毒S蛋白的受体结合结构域(RBD)制成了新型新冠疫苗。革兰氏阴性菌能够产生外膜囊泡(OMV),在哺乳动物体内具有免疫刺激作用,可诱导免疫应答发生并激活树突细胞、T细胞、B细胞等免疫细胞,而经过改造的工程菌产生的OMV内毒性非常低,避免了不良反应的发生。作者使用了一种鼠伤寒沙门氏菌株,通过Spycatcher/Spytag体系使该菌株分泌的OMV通过共价键稳定结合了病毒的RBD(图1)。

                图1 (A)RBD重组抗原的设计,RBD连接到SpyTag的N端和C端;(B)RBD修饰的OMV示意图。


                在这项研究中,作者使用Exoview系统对结合了重组RBD的OMV进行了表征分析,确定OMV上成功结合了新冠病毒的RBD。Exoview在外泌体疫苗开发中,可快速准确地表征外泌体,并统计不同表型外泌体数量并计算其比例,适合作为多组分外泌体疫苗的标准检测手段。


                参考文献:[1]. Linglei Jiang, Tom Driedonks, Maggie Lowman,   Wouter S.P. Jong, ... & Kenneth W. Witwer. (2021). A bacterial extracellular vesicle-based intranasal vaccine against SARS-CoV-2 protects against disease and elicits neutralizing antibodies to wild-type virus and Delta variant. bioRxiv. .


                详情请参考:https://qd-china.com/zh/news/detail/2203041076411




                medRxiv:肺泡灌洗液(BAL)中的CD14+外泌体或可作为急性呼吸窘迫综合征(ARDS)病情严重的判断新指标


                近期有研究表明,外泌体的促炎作用与ARDS的发病相关。肺部受大肠杆菌侵染后分泌的外泌体能够诱发肺部产生炎症反应;而在小鼠肺部损伤建模实验中,含有miRNA内容物(如miR-466)的外泌体能够促进肺泡巨噬细胞分泌炎性因子?;褂醒芯勘砻?,肺泡灌洗液中CD14+的外泌体可能作为慢阻肺COPD的病情活动指标。在本研究中,作者使用Exoview系统对肺泡灌洗液(BAL)中的外泌体进行了表征分析,并且对不同来源的外泌体进行了统计,结果发现CD14+外泌体或可作为急性呼吸窘迫综合征(ARDS)病情严重的判断新指标,为临床上预防或治疗ARDS提供了新的线索。


                参考文献:[1] Mahida, R. Y., Price, J., Lugg, S. T., Li, H., Parekh, D., Scott, A., ... & Thickett, D. R. (2021). CD14 Positive Extracellular Vesicles in Broncho-Alveolar Lavage Fluid as a New Biomarker of Acute Respiratory Distress Syndrome. medRxiv.


                详情请参考:https://qd-china.com/zh/news/detail/2112301135692




                Scientific Reports:使用单外泌体表征分析技术与蛋白组学检测乏氧状态的肾细胞癌外泌体


                肾细胞癌(RCC)是很常见的一种肾脏癌症。RCC现在仍然缺少有效的医学诊断指标,已经成为RCC治疗方法开发的最大挑战。外泌体是一种潜在的癌症诊断指标,细胞分泌的外泌体的组成会因细胞的生理状态不同而发生变化。肿瘤内乏氧是癌症发生、发展及扩散的一个关键因素。研究表明,处于乏氧状态的细胞分泌的外泌体会影响癌细胞的增殖、扩散以及肿瘤血管生成,且与外泌体的内容物有关。外泌体内容物的表型可以通过蛋白组学和转录组学方法检测,但这些方法过于繁琐,难以用于医学诊断。

                单个外泌体表型分析是将免疫学与光学完美结合的一种新技术。该技术首先利用免疫识别将特定的外泌体进行捕获分离,然后再对目标外泌体的表面标志物及内容物(如携带的蛋白质、RNA、DNA及细胞因子)进行定量分析,从而更加全面地反映外泌体的特性。该技术在短短两年时间,备受广大科研工作者的关注。本文将为大家分享使用单外泌体表征分析技术与蛋白组学检测乏氧状态的肾细胞癌外泌体,以供参考。

                图1 ExoView检测乏氧与正常RCC细胞外泌体表型


                参考文献:[1] Samoylenko,   A., K?gler, M., Zhyvolozhnyi, A., Makieieva, O., Bart, G., Andoh, S. S., ...   & Hiltunen, J. (2021). Time-gated Raman spectroscopy and proteomics analyses of hypoxic and normoxic renal carcinoma extracellular vesicles.   Scientific reports, 11(1), 1-14.


                详情请参考:https://qd-china.com/zh/news/detail/2110291415097




                Cell:对不同体液中小RNA测序以筛选胞外RNA提取方法

                 

                exRNA profile会受到不同来源(细胞/组织),不同状态(年龄/健康程度/器官状态)的影响,且由包括外泌体在内的不同的载体运输,加上不同的提取方法和检测技术,均会影响exRNA profile的测定结果。现今的小RNA测序方法已经可以准确地表征exRNA profile,因此合适的exRNA提取方法便至关重要。Srinivasan[1]等通过使用多种exRNA分离方法分离不同位点获得的5种体液中的外泌体,分析结果后总结出了不同体液的适合分离方法。

                其中,研究人员使用单个外泌体表型分析技术(Exoview)检测了来源于人血浆的外泌体的蛋白marker表达,判断出血浆外泌体根据蛋白marker主要分为CD63-/CD81+/CD9+和CD63+/CD81+/CD9+两种。

                人血浆外泌体蛋白表达分析


                参考文献:[1] Srinivasan, S., Yeri, A., Cheah, P. S., Chung, A., Danielson, K., De Hoff, P., ... & Laurent, L. C. (2019). Small RNA sequencing across diverse biofluids identifies optimal methods for exRNA isolation. Cell, 177(2), 446-462.




                Brain Behavior and Immunity:脊髓损伤导致血清神经炎症相关纳米颗粒中miRNA与CD81+外泌体水平的改变


                脊髓损伤(SCI)会对机体产生系统性影响,导致呼吸、免疫、消化等功能异常,以及相关脑区产生神经炎症和退行性病变。有研究表明,SCI的病理与系统性影响可能与血液来源的因子如外泌体的运输有关;而在中枢神经系统损伤模型中,外泌体可能参与了miRNA等炎性因子运输导致炎症扩散。Khan[1]使用包括Exoview外泌体表型分析的多种技术详细表征了SCI建模的小鼠血浆外泌体,发现损伤后外泌体数量、蛋白marker和内容物均有明显的变化,将SCI小鼠的外泌体注射入脑室还可诱发产生炎症。

                研究人员使用ExoView检测了SCI血浆外泌体的粒径、数量、荧光强度和共定位(图1A)。外泌体在CD81和CD9区域产生特异性结合而被捕获,而没有CD63捕获。根据干涉成像获得外泌体尺寸分布,其中在50nm最多(图1B&C)。荧光成像则检测到了大量干涉成像检测不出的尺寸小于50nm的外泌体(图1D&E),CD81和CD9在大量外泌体上表型出荧光共定位,而CD63荧光则未被检测到,这与图1C结果一致(图1F-H)。相比之下,NTA与流式分析无法检测到尺寸小于50nm的外泌体。

                图1 ExoView检测血浆外泌体的粒径、数量、荧光强度和共定位


                研究人员进一步比较了SCI组和对照组的血浆外泌体变化,结果表明,在损伤后1d的时间点,CD81外泌体数量相对对照组更高,与Western Blot的结果一致;而CD9外泌体数量则没有统计学差异,与流式分析的结果一致(图2A&B)?;谕?/span>2HCD81CD9有大量的荧光共定位,检测CD9外泌体的CD81荧光强度,由1d的荧光强度中位数差异可知,

                图2 ExoView检测血浆外泌体的粒径、数量、荧光强度和共定位


                参考文献:[1] Khan, N. Z., Cao, T., He, J., Ritzel, R. M., Li, Y., Henry, R. J., ... & Wu, J. (2020). Spinal cord injury alters microRNA and CD81+ exosome levels in plasma extracellular nanoparticles with neuroinflammatory potential. Brain, behavior, and immunity.




                Cells:CD44糖蛋白在胃癌发生中的作用


                CD44是一种跨膜糖蛋白,能够介导细胞间与细胞-基质间相互作用,主要配体为透明质酸(HA)。研究表明,CD44与肿瘤的生长相关,其在肿瘤细胞中高表达,且CD44与HA的结合亲和力高,因此纳米载体常用HA做表面修饰以作为肿瘤细胞的靶向药物载体。外泌体是天然的靶向信息传递载体,有研究在外泌体中检测到CD44。H?rk?nen等[1]使用胃癌细胞MKN74研究了CD44表达对外泌体分泌,HA合成与肿瘤细胞生长的影响。结果表明,CD44促进了细胞表面和细胞间的HA形成,调控肿瘤微环境;CD44可改变外泌体的物理性质以及靶向性质。

                其中,研究人员使用Exoview检测了MKN74细胞的未经纯化的培养基及分离纯化后的外泌体中的含CD44以及其他标记物的含量。结果表明,相对于对照组,MOCK(CD44敲除)细胞组在未经纯化的培养基及分离纯化后的分泌外泌体的数量显著降低。以上结果表示ExoView可以直接对复杂环境的培养基进行检测,无需分离纯化步骤,且检测结果具有极高特异性。

                ExoView检测表达不同蛋白标记物的外泌体数量


                参考文献:[1] H?rk?nen, K., Oikari, S., Kyykallio, H., Capra, J., Hakkola, S., Ketola, K., ... & Rilla, K. (2019). CD44s assembles hyaluronan coat on filopodia and extracellular vesicles and induces tumorigenicity of MKN74 gastric carcinoma cells. Cells, 8(3), 276.




                Cancer Cell Int:外泌体与miRNA调节成神经管细胞瘤的干细胞性

                 

                脑瘤中部分细胞具有干细胞特性,能够自我更新并分化为不同细胞系。其中,成神经管细胞瘤的病人有25%经过传统疗法后5年内复发并转移导致死亡,存活的病人也受到化疗和放疗的副作用和并发症影响,因此需要一种安全有效的治疗方法。肿瘤细胞的外泌体含有miRNA,能够调节细胞增殖、分化、代谢、凋亡等生理过程并与抗药性相关。有研究表明肿瘤干细胞的外泌体运载了肿瘤细胞特有的miRNA,能够产生有利于肿瘤发展的微环境。Choi等[1]研究了成神经管细胞瘤的外泌体及运载的miRNA及其在肿瘤治疗中的潜在作用。其中,miR-135b和miR-135a在肿瘤干细胞中高表达,抑制两者会导致具有肿瘤抑制作用的Angiomotin?like 2(AMOTL2)表达上升,使肿瘤干细胞的干细胞特性下降。

                其中,研究人员使用ExoView通过荧光成像检测肿瘤细胞与肿瘤干细胞的外泌体标记物,在两种细胞的外泌体上均检测到了Alix和Syntenin两种内蛋白,并且可以确定两种内蛋白与CD63/CD9外泌体标记物共定位。

                Exoview检测外泌体上的Alix(a)与Syntenin(b)蛋白


                参考文献:[1] Choi, S. A., Koh, E. J., Kim, R. N., Byun, J. W., Phi, J. H., Yang, J., ... & Kim, S. K. (2020). Extracellular vesicle-associated miR-135b and-135a regulate stemness in Group 4 medulloblastoma cells by targeting angiomotin-like 2. Cancer cell international, 20(1), 1-14.



                2020年已发表文献


                1. Cytokine profiling in serum-derived exosomes isolated by different methods, Jung HH, Kim JY, Lim JE, Im YH, Nature Scientific Reports 2020

                2. Study of immune-tolerized cell lines and extracellular vesicles inductive environment promoting continuous expression and secretion of HLA-G from semiallograft immune tolerance during pregnancy, Cho K, Kook H, Kang S Lee J, JEV 2020

                3. Annexin A1–dependent tethering promotes extracellular vesicle aggregation revealed with single–extracellular vesicle analysis, Rogers MA, Buffolo F, Schlotter F, Atkins SK, Lee LH, Halu A, Blaser MC, Tsolaki E Higashi H, Luther K, Daaboul G, Bouten CVC, Body SC, Singh SA, Bertazzo S, Libby P, Aikawa M, Aikawa E, Cell Biology 2020

                4. Targeting tumor-derived exosomes using a lectin affinity hemofiltration device, Marleau AM, Jacobs MT, Gruber N, Rodell TC, Ferrone S, Whiteside TL, Cancer Research 2020

                5. Extracellular Vesicle and Particle Biomarkers DefineMultiple Human Cancers. Hoshino A, Kim HS, Bojmar L, Gyan KE, Cioffi M, Hernandez J, Zambirinis CP, Rodriques G, Molina H, Heissel S, Mark MT, Steiner L, Benito Martin A, Lucotti S, Di Giannatale A, Offer K, Nakajima M, Williams C, Lyden D., Cell 2020

                6. Reporter mice for isolating and auditing cell type‐specific extracellular vesicles in vivo, McCann JV, Bischoff SR, Zhang Y, Cowley DO, Sanchez-Gonzalez V, Daaboul GG, Dudley AC, Genesis 2020

                7. High yield and scalable EV production from suspension cells triggered by turbulence in a bioreactor, Grainger A, Wilhelm C, Gazeuah F, Silva A, Cytotherapy 2020

                8. Extracellular Vesicles: A New Frontier for Research in Acute Respiratory Distress Syndrome, Mahida RY, Matsumoto S, Matthay MA. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology 2020

                9. Small extracellular vesicles modulated by αVβ3 integrin induce neuroendocrine differentiation in recipient cancer cells, Quaglia F, Krishn SR, Daaboul GG, Sarker S, Pippa R, Domingo-Domenech J, Kumar G, Fortina P, McCue P, Kelly WK, Beltran H, Liu Q, Languino LR., Journal of Extracellular Vesicles, Volume 9, Issue 1, 2020

                10. Characterisation of extracellular vesicles surface markers and co-expression studies with single particle interferometric imaging platform, Kusuma G, Lim R., Cytotherapy, Volume 22, Issue 5, 2020

                11. Engineering mesenchymal stem cell paracrine activity with 3D culture, Kusuma G, LiA, Zhu D, McDonald H, Chmabers D, Frith J, Lim R.,Cytotherapy, Volume 22, Issue 5, 2020

                12. Release of extracellular vesicle miR-494-3p by ARPE-19 cells with impaired mitochondria,Ahn JY, Datta S, Cano M, Mallick E, Rai U, Powell B, Tian J, Witwer KW, Handa JT, Paulaitis ME.,Biochim Biophys Acta Gen Subj. 2020 Mar 30:129598. (doi: 10.1016/j.bbagen.2020.129598)

                13. Advantageous Antibody Microarray Fabrication Through DNA-Directed Immobilization: A Step Toward Use of Extracellular Vesicles in Diagnostics, Brambila D, Sola L, Chiari M., Talanta 2020

                14. Unannotated small RNA clusters in circulating extracellular vesicles detect early stage liver cancer, Villanueva et al, bioRxiv preprint 2020 (doi: https://doi.org/10.1101/2020.04.29.066183)

                15. Membrane-Binding Peptides for Extracellular Vesicles On-Chip Analysis, Gori A, Romanato A, Bergamaschi G, Strada A, Gagni P, Frigerio R, Brambilla D, Vago R, Galbiati S, PIcciolini S, Bedoni M, Daaboul G, Chiari M, Cretich M., Journal of Extracellular Vesicles, Volume 9, Issue 1, 2020

                16. Subpopulations of extracellular vesicles from human metastatic melanoma tissue identified by quantitative proteomics after optimized isolation, Crescitelli R, L?sser C, Jang SC, Cvjetkovic A, Malmh?ll C, Karimi N, H??g JL, Johansson I, Fuchs J, Thorsell A, Gho YS, Bagge RO, L?tvall J, Journal of Extracellular Vesicles , 2020

                17. Extracellular Vesicles Derived from Induced Pluripotent Stem Cells Promote Renoprotection in Acute Kidney Injury Model, Collino F, Lopes JA, Tapparo M, Tortelote GG, Kasai-Brunswick TH, Lopes GMC, Almeida DB, Skovronova R, Wendt CHC, de Miranda K, Bussolati B, Vieyra A, Soares Lindoso R., Cells, 2020

                18. Extracellular Vesicles: A New Frontier for Research in Acute Respiratory Distress Syndrome,Mahida RY, Matsumoto S, Matthay MA. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology, 2020

                19. Exosomes A clinical COmpendium - Methods for exosome isolation and characterization,Zhou M, Weber SR, Zhao Y, Chan H, Sundstrom JM. Exosomes A Clinical Compendium 2020

                20. Phenotypic analysis of extracellular vesicles: a review on the applications of fluorescence,Panagopoulou MS, Wark AW, Birch DJS, Gregory CD. Journal of Extracellular Vesicles, 2020

                21. Immune Cell-Derived Exosomes in the Cancer-Immunity Cycle Yan W, Jiang S, Trends in Cancer 2020


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